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厦门医学院自考《药理学(护专)实践》课程实践考核大纲内容见下:

《药理学(护专)实践》课程实践考核大纲
一、课程基本信息
专业名称/代码 | 护理(专科)/520201 |
课程名称/课程代码 | 药理学(护专)实践/13194 |
课程类别 | 公共基础课( √ ) 专业核心课( ) |
实践考核单位 | 厦门医学院 |
二、实践考核目标
1.以药理学实验的基本知识、技术和方法为基础,结合不同作用类别的药物,使学生掌握药理学实验的基本知识,掌握药理学实验的基本技能,验证药理学中的基本理论,牢固掌握药理学的基本概念;了解在药物发现和评价过程中,药理学研究的内容和必要性。
2.通过药理学实验,使学生了解获得药理学知识的科学途径,同时培养学生实践操作、互助协作、独立思考、综合分析和解决问题能力。
三、实践考核内容
实践项目1 不同剂量对药物作用的影响
(一)实践考核目的
1.比较同一药物不同剂量下药物作用的差异。
2.验证中枢抑制药中枢神经系统的抑制作用。
3.掌握小鼠的基本实验操作,包括捉持、随机分组、称重、标记、腹腔注射、处死等。
4.熟悉常用手术器械手术剪和眼科镊的正确使用。
(二)主要仪器或标本
1.实验动物:小鼠,体重18-22g,雄性,实验前隔夜禁食不禁水约8h。
2.受试药:中枢抑制药——苯巴比妥钠(规格:0.1g)和水合氯醛,用生理盐水(NS.)配制或稀释。
3.实验试剂:5%苦味酸、生理盐水、蒸馏水、75%乙醇。
4.实验器材:托盘、注射器(1ml)、标签纸、手术器械、小鼠笼1个、大烧杯或小鼠笼5个(动物观察用)、电子天平、中烧杯(动物称重用)、油性红色记号笔、棉签1支(蘸取苦味酸用)、量程(10-5000ul)的移液器和移液器架、移液器配套吸头、EP管、标签纸、试管架、棉球、擦手纸、10ml量筒、离心管、涡旋仪、废液缸。
5.其他物品:科学计算器、碘伏、一次性口罩和乳胶手套。
(三)实践方法(或步骤)
1.配液:以下溶液都用生理盐水配制。
1) 三个浓度的水合氯醛溶液,各1ml。
2) 三个浓度的苯巴比妥钠溶液,各1ml。
2.小鼠随机分组(n=12)、编号、称重、给药
3.腹腔注射 (ip.)不同剂量的中枢抑制药水合氯醛对小鼠的催眠作用
组别 | 药物:水合氯醛(0.1ml/10g,n=2/组) | ||
剂量(mg/kg) | 药物浓度(%) | ||
高剂量组 | 500 | 5% | |
中剂量组 | 224 | 2.24% | |
低剂量组 | 100 | 1% | |
4.腹腔注射 (ip.)不同剂量的中枢抑制药苯巴比妥钠对小鼠的催眠作用
组别 | 药物:苯巴比妥钠(0.1ml/10g, n=2/组) | ||
剂量(mg/kg) | 药物浓度(%) | ||
高剂量组 | 200 | 2% | |
中剂量组 | 141 | 1.41% | |
低剂量组 | 100 | 1% | |
从高剂量开始给药,给药后即刻记时,将小鼠放入烧杯或鼠笼中进行笼边观察,记录小鼠从给药到开始出现翻正反射消失的时间(即药物作用的潜伏期),并继续观察并计时,直至翻正反射恢复。若个别动物因药物过量致死,请注明并记录死亡时间。
小鼠催眠作用的主要指标:翻正反射的消失。
【观察时间】酌情为30-60min
以翻正反射消失与恢复的时间,计算:
①药物作用的潜伏期(min)=翻正反射消失时间-给药时间
②药物作用的持续期(min)=翻正反射恢复时间-翻正反射消失时间
(若30min后翻正反射仍未恢复,受课堂时间所限,不再继续观察,持续期用>30min表示)
实践项目2 不同给药途径对药物作用的影响
(一)实践考核目的
1.比较同一药物不同给药途径下药物作用的差异 (药物作用的快慢、药物作用的性质)。
2.验证中枢兴奋药对中枢神经系统的兴奋作用。
3.验证硫酸镁在不同给药途径下(口服及腹腔注射)的不同作用。
4.掌握小鼠的基本实验操作,包括捉持、随机分组、称重、标记、各种途径的给药方法(腹腔注射、灌胃、皮下注射、肌肉注射、尾静脉注射等)、尸体解剖和大体肉眼观察、处死等。
5.熟悉常用手术器械手术剪和眼科镊的正确使用。
(二)主要仪器或标本
1.实验动物:小鼠,体重18-22g,雄性,实验前隔夜禁食不禁水约8h。
2.受试药:①中枢兴奋药,可选尼可刹米注射液(规格:0.375g,1.5ml);②硫酸镁。均用生理盐水(NS.)配制或稀释。
3.实验试剂:5%苦味酸、生理盐水、蒸馏水、75%乙醇。
4.实验器材:托盘、注射器(1ml,2ml备用)、标签纸、小鼠灌胃针头、手术器械、蛙板及固定钉4个、小鼠笼1个、大烧杯5个(动物观察用,不够则用小鼠笼替代)、电子天平、中烧杯(动物称重用)、油性红色记号笔、棉签1支(蘸取苦味酸用)、量程(10-5000ul)的移液器和移液器架、移液器配套吸头、EP管、标签纸、试管架、棉球、擦手纸、10ml量筒、离心管、涡旋仪、废液缸。
5.其他物品:其他物品:科学计算器、碘伏、一次性口罩和乳胶手套。
(三)实践方法(或步骤)
1. 配液:以下溶液都用生理盐水配制。
1) 3.25%的尼可刹米溶液,5ml。
2) 5%和10%的硫酸镁溶液,各2ml。
2.小鼠随机分组(n=18)、编号、称重、给药
3.不同给药途径的中枢兴奋药尼可刹米对小鼠的惊厥作用
3.25 %尼可刹米(325mg/kg,0.1ml/10g,n=2/组) |
尾静脉注射组(iv.) 腹腔注射组(ip.) 肌肉注射组(im.) 皮下注射组(sc.) 灌胃组(ig.) |
给药后即刻计时,将小鼠放入烧杯或鼠笼中进行笼边观察,记录小鼠从给药到开始出现惊厥先兆的时间(即药物作用的潜伏期)。),若动物有从兴奋状态恢复正常(超过1分钟),记录恢复时间。若有个别动物因药物过量致死,请注明并记录死亡时间。
观察的主要指标为中枢兴奋作用——惊厥反应。观察时间不少于30min。计算:①药物作用的潜伏期(min)=惊厥先兆发生时间-给药时间;②药物作用的持续期(min)=兴奋状态结束时间-惊厥先兆发生时间。
2.不同给药途径的硫酸镁对小鼠作用性质的影响,0.1ml/10g ,n=2/组。
| 剂量(mg/kg) | 药物浓度(%) | |
灌胃组 | 硫酸镁给药组 | 1000 | 10% |
500 | 5% | ||
生理盐水对照组 | / | / | |
腹腔 注射组 | 硫酸镁给药组 | 500 | 5% |
生理盐水对照组 | / | / | |
给药后即刻计时,将小鼠放入烧杯或鼠笼中进行笼边观察。给药后死亡的小鼠,及给药后20-30分钟后所有存活小鼠都予以处死,然后进行尸解、大体肉眼观察并记录;对小鼠情况进行比较。
提示:1)全身作用:体态、活动性、骨骼肌张力、呼吸(频率、深浅度)、翻正反射(存在/消失)……2)局部作用(即肠道作用):排便情况、肠蠕动情况、肠膨胀程度、粪便容量及性状……
实践项目3 绘制水杨酸钠标准曲线
(一)实践考核目的
1.掌握标准曲线的绘制方法
2.掌握测定药物浓度的一种方法——比色法
3.掌握配制药物的倍比稀释法。
(二)主要仪器或标本
1.受试药:10%水杨酸钠溶液(用生理盐水配制)。
3.实验试剂:10%三氯醋酸(TCA)、10%三氯化铁、生理盐水、蒸馏水。
4.实验器材:10mL量筒及吸管(量取7mLTCA用)、污物缸、试管架、EP管、离心管、量程(10-5000uL)的移液器和移液器架、移液器配套吸头、漩涡混合器、面巾纸、棉签、棉球、纱布、标签纸、离心机、配平用托盘天平及小烧杯两个、滴管、723分光光度计、石英或玻璃比色皿、擦镜纸、洗瓶。
5.其他物品(自备):科学计算器、U盘、碘伏一瓶、一次性口罩和乳胶手套。
(三)实践方法(或步骤)
1. 配液:精确配置0.5%、0.25%、0.125%、0.05%,和0.005%五个浓度的水杨酸钠标准液。
2.按顺序配置6个待测样品
标准管号 | 0(调零管) | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
TCA | 7ml | 7ml | 7ml | 7ml | 7ml | 7ml |
蒸馏水 | 2ml | / | / | / | / | / |
水杨酸钠 | / | 0.5%,2ml | 0.25%,2ml | 0.125%,2ml | 0.05%,2ml | 0.005%,2ml |
混匀 | ||||||
取液 | 6ml | 6ml | 6ml | 6ml | 6ml | 6ml |
FeCl3 | 0.6ml | 0.6ml | 0.6ml | 0.6ml | 0.6ml | 0.6ml |
摇匀显色 | ||||||
3.以调零管为对照管,依次从浓度由低到高以比色法测定OD
标准管号 | 0(调零管) | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
OD值(520nm) | / |
4. 在电脑上绘制出水杨酸钠标准曲线
实践项目4 家兔水杨酸钠血药浓度及半衰期的测定
(一)实践考核目的
1.掌握测定血药浓度的一种方法——比色法
2.掌握两种药-时曲线的绘制,即:①C-t曲线;②lgC-t曲线
3.能够利用lgC-t药-时曲线计算t1/2
4.掌握家兔的基本实验操作,包括捉持、固定、麻醉、耳缘静脉给药、颈总动脉插管和采血、处死等。
5.掌握手术器械的正确使用,包括手术刀的正确装卸、器械打结(外科结)、组织钝性分离等。
(二)主要仪器或标本
1.实验对象:家兔(2-3kg),雌雄不拘,实验前禁食不禁水12小时。
2.受试药:10%水杨酸钠溶液(用生理盐水配制)。
3.实验试剂:20%乌拉坦、利多卡因注射液(5mL,0.1g)、10%三氯醋酸(TCA)、10%三氯化铁、肝素(2mL:12500U)、生理盐水、蒸馏水、75%乙醇。
4.实验器材:手术灯、兔固定箱、兔手术台、标签纸、10mL量筒及吸管(量取7mLTCA用)、注射器、头皮针、污物缸、手术器械一套、细丝线、动脉夹、动脉插管、试管架、EP管、离心管、婴儿秤、量程(10-5000uL)的移液器和移液器架、移液器配套吸头、漩涡混合器、面巾纸、棉签、棉球、纱布、标签纸、绑绳、离心机、配平用托盘天平及小烧杯两个、滴管、723分光光度计、石英或玻璃比色皿、擦镜纸、洗瓶。
5.其他物品(自备):科学计算器、U盘、碘伏一瓶、一次性口罩和乳胶手套。
(三)实践方法(或步骤)
1. 动物麻醉:家兔抓拿、称重、全身麻醉(20%乌拉坦),将其固定于手术台。
2.作采血准备:颈部备皮、切开皮肤、钝性分离一侧颈总动脉并作动脉插管以备采血之用(动脉导管预注肝素)。操作前应预先对采血管(EP管)进行肝素化处理。
3.给予受试药:10%水杨酸钠溶液(2ml/kg),通过耳缘静脉或颈静脉快速给药,给药即刻开始记时。
4.采集血样:采血后应及时处理血样
(1)取肝素化采血管6支,并标记0-5号
(2)分别于给药前和给药后五个时间点(3、5、15、25、40min)采集不少于2ml的血液,分别置于0-5号的肝素化采血管中,然后及时取出2ml置于离心管中与TCA在涡旋仪上充分混匀备用。
5.比色法测定不同时间点血样的OD值,并通过标准曲线计算各时间点水杨酸钠的血药浓度
| 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
采血时间(min) | 给药前 | |||||
TCA | 7ml | 7ml | 7ml | 7ml | 7ml | 7ml |
血 | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml |
应立即用漩涡混合器充分混匀,避免形成血块,影响药物提取↓ 离心(2000转/min,5 min) | ||||||
上清液 | 6 ml | 6 ml | 6 ml | 6 ml | 6 ml | 6 ml |
10%FeCl3 | 0.6 ml | 0.6 ml | 0.6 ml | 0.6 ml | 0.6 ml | 0.6 ml |
摇匀显色,以“给药前”为对照管,按颜色由浅到深测OD值 | ||||||
OD值 | 0 | |||||
以“给药前”为对照管进行调零比色。取离心管6支,并标记0-5号
6.依据水杨酸钠标准曲线计算水杨酸钠血药浓度,制作药时曲线:①C-t曲线;②lgC-t散点图
7.根据lgC-t散点图,初步判断房室数,然后拟合lgC-t曲线
8.利用lgC-t曲线,计算药动学参数t1/2
实践项目5 传出神经系统药物对家兔血压的影响
(一)实践考核目的
1.观察及验证肾上腺素受体激动药及阻滞药对家兔血压的影响,包括量效关系、受体拮抗药对受体激动药的拮抗作用等。
2.掌握家兔的基本实验操作,包括捉持、固定、麻醉、耳缘静脉给药、颈总动脉插管及动脉血压的测定、处死等。
3.掌握手术器械的正确使用,包括手术刀的正确装卸、器械打结(外科结)、组织钝性分离等。
(二)主要仪器或标本
1.实验对象:家兔(2-3kg),雌雄不拘,实验前禁食不禁水12小时。
2.受试药:肾上腺素受体激动药和阻断药。
3.实验试剂:20%乌拉坦(NS.配制)、利多卡因注射液(5mL,0.1g,备用)、肝素生理盐水(62.5u/mL)、生理盐水、蒸馏水、75%乙醇。
4.实验器材:婴儿秤、棉球、纱布、标签纸、手术灯、计算机(BL-420N生物信号采集与分析系统)、保护电极、生物血压传感器(血压换能器)、三通管、双凹夹、三角架、兔固定箱、兔手术台、绑绳、注射器、污物缸、手术器械一套、细纱线、动脉夹、动脉插管(连血压换能器)、静脉插管(备用)、头皮针。
5.其他物品:碘伏一瓶(备用)、一次性口罩和乳胶手套若干(自备) 、科学计算器(自备)、U盘(自备)。
(三)实践方法(或步骤)
1.仪器连接:连接动脉导管、三通开关与血压换能器。
2.家兔抓拿、称重、麻醉及固定,行颈部手术、行颈总动脉插管,并与血压换能器相连,在生物信号记录系统获得最佳血压曲线。
3.行颈外静脉插管(给药备用)
4.观察和记录正常及给药后血压的变化:
①观察和记录一段正常血压曲线,作给药前正常对照。
②经静脉依次给予传出神经系统药物,观察并记录血压变化情况。
a.肾上腺素受体激动药对血压的作用及a受体阻断药对其血压作用的影响。
b.肾上腺素受体激动药对血压的作用及b受体阻断药对其血压作用的影响。
文章来源:https://www.xmmc.edu.cn/jxjy/info/1241/4106.htm
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